用途：

      FluorPen FP 110快速植物脅迫測量儀可在實驗室、溫室或野外快速測量植物受生物或非生物脅迫后的光合活性狀態(tài)，具有攜帶方便、準(zhǔn)確度高、性價比高等特點(diǎn)；測量參數(shù)包括Fo、Ft、Fm、Fm’、QY、NPQ等，還可以進(jìn)行OJIP分析和光響應(yīng)曲線動力學(xué)研究。

       PAR-FluorPen FP 110是FP 110的升級版，可以直接測量400-700nm范圍內(nèi)光合有效輻射PAR（umol/m2/s），光量子傳感器對400-700nm波段的光具有均勻的響應(yīng)，實時讀數(shù)為20個測量值的平均值。

      測量的數(shù)據(jù)存儲于儀器內(nèi)部，通過藍(lán)牙或USB與計算機(jī)連接，采用專業(yè)的軟件進(jìn)行數(shù)據(jù)傳輸和分析，數(shù)據(jù)可視化。

測量原理：利用調(diào)制-飽和-脈沖熒光技術(shù)，測量并計算葉綠素?zé)晒鈪?shù)。

應(yīng)用領(lǐng)域：       

適用于光合作用研究和教學(xué)，植物及分子生物學(xué)研究，農(nóng)業(yè)、林業(yè)，生物技術(shù)領(lǐng)域等。研究內(nèi)容涉及光合活性、脅迫響應(yīng)、農(nóng)藥藥效測試、突變體篩選等。       

植物光合特性和代謝篩選       

生物和非生物脅迫的檢測       

植物抗脅迫能力或者易感性研究       

代謝紊亂研究       

生長長勢與產(chǎn)量評估       

植物——微生物交互作用研究       

植物——原生動物交互作用研究

 軟件：       

 FluorPen 1.1版本，支持windows 7及更高版本       

實時及遠(yuǎn)程控制功能       

藍(lán)牙和USB通訊       

可視化數(shù)據(jù)，可轉(zhuǎn)換成Excel格式       

GPS地圖

參數(shù)介紹       

Ft——非光化光下的實時熒光，暗適應(yīng)后Ft = Fo；       

QY——PSII量子產(chǎn)量。暗適應(yīng)QY = Fv/Fm，光適應(yīng)QY = Fv’/Fm’;Fv/Fm是使用頻繁的熒光參數(shù)。       

OJIP——葉綠素?zé)晒饪焖偎矐B(tài)分析是一種簡單、非侵入性測量葉綠體功能的方法。OJIP分析可以靈敏、準(zhǔn)確的分析光化學(xué)系統(tǒng)的功能和活性。       

NPQ——儀器提供2組測量程序，每組程序均有持續(xù)照光和黑暗恢復(fù)階段。

NPQ測量是一種典型的量化暗適應(yīng)后樣品光化學(xué)和非光化學(xué)淬滅的工具。       

LC——儀器內(nèi)置3組光曲線測量程序，每組程序的脈沖數(shù)量、持續(xù)時間以及光強(qiáng)均不同。LC光曲線程序?qū)B續(xù)光照下不同光強(qiáng)照射的樣品光合作用進(jìn)行連續(xù)測量，將光合作用速率與光強(qiáng)聯(lián)系起來。       

PAR——光合有效輻射（PAR-FluorPen FP 110版本具有此功能） 

技術(shù)規(guī)格：

案例介紹：

案例1：正常澆水與干旱脅迫下接種固氮螺菌屬及叢枝菌對水稻光合活性(Fv/Fm)的影響

WW：正常澆水   

D：干旱脅迫

M：Glomus intraradices

A：Azospirillum brasilense

無論是正常澆水會干旱脅迫，接種兩種菌后水稻的光合效率均顯著增加，而兩種菌都接種的樣品，光合效率增加較多，水分條件對水稻的光合效率沒有顯著影響。

案列2：鹽脅迫對接種叢枝菌的萵苣光合活性(Fv/Fm)的影響

無論接種叢枝菌與否，隨著鹽度的增加，萵苣光合活性菌降低，80mM時的顯著低于0和40mM，表明高濃度鹽迫降低萵苣光合效率；無論什么鹽濃度下，接種叢枝菌的萵苣光合活性菌顯著高于未接種的，表明叢枝菌對萵苣的光合效率有顯著促進(jìn)作用，增加了萵苣的耐鹽性。 

近期發(fā)表文獻(xiàn)：

AJIGBOYE O. O., LU CH., MURCHIE E. H., ET AL. (2017). Altered gene expression by sedaxane increases PSII efficiency, photosynthesis and growth and improves tolerance to drought in wheat seedlings. Pesticide Biochemistry and Physiology. Volume 137. Pages 49-61. DOI: 10.1016/j.pestbp.2016.09.008

CHEKANOV К., SCHASTNAYA E., SOLOVCHENKO A., ET AL. (2017). Effects of CO2 enrichment on primary photochemistry, growth and astaxanthin accumulation in the chlorophyte Haematococcus pluvialis. Journal of Photochemistry and Photobiology B: Biology. Volume 171. DOI 10.1016/j.jphotobiol.2017.04.028

DUARTE B., PEDRO S., MARQUES J. C., ET AL. (2017). Zostera noltii development probing using chlorophyll a transient analysis (JIP-test) under field conditions: Integrating physiological insights into a photochemical stress index. Ecological Indicators. Volume 76. DOI: 10.1016/j.ecolind.2017.01.023

HERNáNDEZ-CLEMENTE R., NORTH P.R.J., HORNERO A., ET AL. (2017). Assessing the effects of forest health on sun-induced chlorophyll fluorescence using the FluorFLIGHT 3-D radiative transfer model to account for forest structure, Remote Sensing of Environment,. Volume 193. Pages 165-179. DOI: 10.1016/j.rse.2017.02.012

LEE M. W., HUFFAKER A., CRIPPEN D., ET AL. (2017). Plant Elicitor Peptides Promote Plant Defenses against Nematodes in Soybean. Molecular Plant Pathology. DOI: 10.1111/mpp.12570MARTEL A. B. AND QADERI M. M. (2017). Light quality and quantity regulate aerobic methane emissions from plants. Physiol Plantarum. Volume 159. DOI:10.1111/ppl.12514 

產(chǎn)地：捷克