制備色譜技術(shù)與操作；半制備HPLC：儀器管路粗，進樣體積大（可達1m；制備色譜柱和填料：玻璃柱和不銹鋼柱，填料可為硅膠；親水樣品選擇正相固定相；大分子選擇離子交換色譜固定相；碳水化合物選擇疏水色譜固定相；無機離子選離子色譜固定相；合成聚合物選凝膠色譜固定相；立體異構(gòu)樣品選環(huán)糊精固定相；外消旋樣品選手性固定相；樣品前處理：萃取、過濾、結(jié)晶、固相萃??；裝柱方法：
制備色譜技術(shù)與操作

半制備HPLC：儀器管路粗，進樣體積大（可達1mL以上），進樣量大（一般可達到幾十毫克），檢測池大，泵耐壓大，流速高（可達10mL/min甚至更高），柱子內(nèi)徑3cm~100cm，含餾分收集器，可以制備樣品進行其它定性檢測，或接分析柱也可進行HPLC分析。

制備色譜柱和填料 ：玻璃柱和不銹鋼柱，填料可為硅膠、鍵合固定相（如C18）、離子交換樹脂 、聚酰胺、 氧化鋁、 凝膠，對硅膠進行硝酸銀（或緩沖液）處理可提高分離效果。疏水樣品選擇反相固定相

親水樣品選擇正相固定相

大分子選擇離子交換色譜固定相

碳水化合物選擇疏水色譜固定相

無機離子選離子色譜固定相

合成聚合物選凝膠色譜固定相

立體異構(gòu)樣品選環(huán)糊精固定相

外消旋樣品選手性固定相

樣品前處理：萃取、過濾、結(jié)晶、固相萃取。

裝柱方法：顆粒直徑小于20－30um的固定相采用濕法裝填，使相對稀松的固定相懸漿以高速裝入色譜柱子，從而減少空隙的形成。柱直徑大于20mm，所加壓力為30－40bar時，采用柱長壓縮技術(shù)，先將固定相懸漿（或偶爾是干填充物）裝入柱中加壓，利用物理方法將其壓緊，如徑向壓縮和軸向壓縮。

流動相：色譜分離后要旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)溶劑，不宜采用高毒性溶劑，少用多元溶劑，溶劑的純度也要考慮。堿性流動相不能用于硅膠柱，酸性流動相不能用于氧化鋁、氧化鎂等吸附劑的柱系統(tǒng)，離子交換樹脂＆排阻色譜遇到某些有機溶劑會膨脹或收縮，從而改變柱床的性質(zhì)。流動相中加入有機胺可以減弱堿性溶質(zhì)與殘余硅醇基的強相互作用，減輕或消除峰拖尾現(xiàn)象。 流動相選擇方法（1）由強到弱： 一般先用90%的乙腈(或甲醇)/水(或緩沖溶液)進行試驗， 這樣可以很快地得到分離結(jié)果，然后根據(jù)出峰情況調(diào)整有機溶劑(乙腈或甲醇)的比例。（2）三倍規(guī)則：每減少10%的有機溶劑(甲醇或乙腈)的量，保留因子約增加3倍，此為三倍規(guī)則。

（3）粗調(diào)轉(zhuǎn)微調(diào)：當分離達到一定程度，應(yīng)將有機溶劑10%的改變量調(diào)整為5%，并據(jù)此規(guī)則逐漸降低調(diào)整率，直至各組分的分離情況不再改變。

加樣： 可采用注射器進樣、旋轉(zhuǎn)閥進樣、六通閥進樣、主泵進樣、輔泵進樣或固體上樣。 檢測器： 一般的分析池的zui大允許流速僅為5 mL/min 或者10mL/min。而專門的制備池的

zui大允許流速可為150mL/min。有時，采用旁路分離管，將少量流體導(dǎo)入分析池進行檢測，是一個不錯的辦法，但其濃度的誤差會相對較大。

1 問: 我想購買waters600用于分析和制備，對于其配備有什么好的建議。

可以配一個PDA，另外加一個示差折光410，另外買幾根制備柱就可以了。waters600的流速zui大為20mL/min，一般可以配20mm ID的制備柱，一次分離10-100mg的樣品，如果樣品量更大，可以通過配件擴展到45mL/min，使用30mm ID的制備柱。另外為了保證餾分收集的準確性，配上Fraction II 餾分收集器。如果樣品數(shù)量很大，可以配2767 sample manager和ZQ MS, 同時做自動進樣并通過MS或U號自動收集餾分。zui大通量每天可以處理100-200個樣品。

2 問： 如何用制備色譜柱制備低含量的雜質(zhì)？

制備色譜柱為Zorbax SB-C18 9.4*250mm及gilson餾分收集器，色譜儀為Agilent 1100或LC-6A。想用其制備面積歸一化法含量為0.05%左右的雜質(zhì)，初步提純后用高分辨的LC-MS進行定性分析。如何設(shè)定色譜條件，如流量，進樣量，樣品的濃度，切割點的設(shè)置，是否要濃縮，要求將95%以上的主峰切除。（主峰后有二個雜質(zhì)靠得很近。）

(1)制備用的流動相等級高一點，否則流動相中的雜質(zhì)會影響LC-MS分析。

(2)使用餾分收集器時，延遲體積一定要計算，檢測器的響應(yīng)時間設(shè)到zui小，否則都會影響收集的純度和回收率。制備柱的流速一般與直徑的平方成正比，如果4.6mm分析柱流速為1mL/min，9.4mm制備柱用1*（9.4/4.6）2, 大約為4ml/min。進樣量設(shè)到幾個mg應(yīng)該基本沒有過載。進樣樣品濃度越高越好。假如進樣10mg，理論計算0.05%的雜質(zhì)大約只有5ug，顯然濃度太低，是多做幾次，合并餾分然后濃縮后做LC-MS分析。

3 問：我想用hplc分離一個簡單的多肽,我應(yīng)該選用什么樣的流動相,梯度和柱子?

RP-HPLC的C18柱可以制備很少量的肽，如果用RP-HPLC，首先應(yīng)該用同類型的分析柱子分析一下多肽含多少雜質(zhì)，設(shè)置緩緩的梯度的分離樣品，根據(jù)峰形逐漸放大純化的方法。 4 問：TFA在緩沖液中是不是只起到調(diào)節(jié)pH的作用呢？TFA的濃度越高基線的漂移越厲害，那是不是說它的濃度在緩沖液pH允許的情況下越低越好呢？

（1）TFA起到類似離子對的作用，一般濃度在0.05-0.1%，過高的濃度，會使溶液偏酸，長

時間使用可能影響柱子壽命。（2）同時TFA可以抑制硅膠表面硅醇基，改善堿性化合物的峰型。有時0.1%TFA分離不好的話。可以考慮加大濃度到0.2%。但要注意用完后及時沖洗色譜柱。（3）走梯度時，因為走成基線漂移，但對制備的影響不大。

5 問：樣品如果溶解度太低如何上制備HPLC？

（1） 了解一下樣品的性質(zhì),根據(jù)其酸堿性,極性等性質(zhì)，通過調(diào)節(jié)溶劑的pH值等, 以達到較好的溶解度。（2）樣品可能某種晶型難溶，這樣可以加入其他溶劑（如丙酮等）以助溶。

（3）不是一定要用流動相來溶解樣品，對溶解度差的樣品，可以選擇甲醇，THF或DMSO等溶解樣品。特別是DMSO，對一般的化合物溶解度都很好。并且在反相柱上不保留，不會造成干擾。而且DMSO的洗脫能力很弱，一般不會影響峰型。（4） 可以固體上樣。 6 問：多肽的分離制備, 如何上量？如何增大分離度?

反相HPLC應(yīng)當是很好的分離小肽方法，用CH3CN或CH3OH：H2O（95：5）做流動相，看保留如何，若無保留，建議改用其他色譜方法進行分離。

關(guān)于多肽的分離，首先要知道它的分子量大小，然后選擇不同類型的填料，如孔徑的大小。我們先在分析柱（4.6MM內(nèi)徑）上做一下實驗,找到zui大的分離度,這一過程的難度是zui大的,要不斷地改變流動相和固定相,然后再線性或非線性放大到制備,放大的倍數(shù)按分析柱的實驗結(jié)果。分離后可以通過冷凍干燥得到固體。

還可以考慮離子交換來分離多肽。

7 問： 做柱層析時（國產(chǎn)大孔吸附樹脂），怎么才能把洗脫液中的樹脂殘留物處理干凈？ 大孔吸附樹脂在上使用前，一般需要進行處理，方法包括用色譜純的甲醇或乙睛洗到?jīng)]有吸收；或樹脂用乙醇浸泡2天，丙酮浸泡2天，然后用常規(guī)的酸，堿洗。再用丙酮回流二小時就可以用了。

8 問：由分析型液相轉(zhuǎn)為制備型液相，其色譜系統(tǒng)需作多大調(diào)整？是否可以按照柱體積折算只改變流速？其上樣量多大為宜？

（1）泵要換，流量要加大，壓力可不變或減少；流通池要換體積更大的。

（2）整個系統(tǒng)的管路要更換更粗的，否則壓力太大,而且特別容易發(fā)生堵塞。對流通池后的管路，增加反壓調(diào)節(jié)器，否則管路太短的話，反壓小會導(dǎo)致流通池氣泡，管路長的話會導(dǎo)致峰展寬。

（3）檢測器的響應(yīng)時間和峰寬要設(shè)置合適，否則會導(dǎo)致收集時延遲體積的計算不準。

（4）上樣量主要根據(jù)柱子的大小、樣品的濃度、制備是否根據(jù)分析條件放大（例如制備柱是否還用分析用填料）；一般上樣量與柱子直徑的平方以及長度成正比。

9 問：流動相中含有鹽時，收集液該如何除鹽？選用揮發(fā)性酸，堿或鹽（如醋酸銨）是否會在揮干溶劑或凍干過程中直接除去？

一般可以采用離子吸附的辦法去掉（可以參考離子吸附有關(guān)技術(shù)）。但也是稍微麻煩的事情，，不加酸堿鹽，如果要加的話，要加揮發(fā)性的或者對產(chǎn)品或者檢測沒有干擾的。 可用G25脫鹽，它是安馬西亞出的一種葡聚糖凝膠。交聯(lián)度大孔徑小,對小分子的無機鹽保留較大,而對分子量較大的有機物沒有保留從而可以將鹽份脫除。另外采用揮發(fā)性的酸，堿時，一般會在干燥過程中直接除去，但如果樣品也有酸堿性，可能會與這些揮發(fā)性酸堿形成一定比例的鹽。

10 問：制備型柱子柱壓上升、柱效下降怎么辦？

堵塞柱子的原因：

（1） 如果您所分離的樣品中雜質(zhì)較多而您在上樣前沒有經(jīng)過過濾（0.45微米），一些顆粒性雜質(zhì)會積聚在柱頭造成柱壓升高，

（2） 也有可能是因為您所使用的流動向中含有緩沖鹽的原因，結(jié)晶或發(fā)生化學變化而堵塞?？梢园阎記_一沖。

（3）流動相是否符合液相色譜的要求？是否過濾處理？

柱子再生辦法：

（1）依次用水，甲醇，四氫呋喃，甲醇來沖洗柱子，每種溶劑5-10個柱體積。（2）如果效果不明顯，將柱子按以上順序反沖，但一般將大大降低柱子效果。

（3）如果效果還是不好，就需要打開色譜柱，超聲波清洗篩片。必要時挖掉色譜柱內(nèi)受污染部位，填入新的填料，還可用3個月。（填的時候小心，別重新污染柱子）

11 問：制備柱柱跑干了影響柱效嗎?

如果時間不長的話,可以用流動相多沖幾個小時.柱效不一定變化很大.如果時間太久,柱效一定變低. 具體造成影響有多大，要靠柱效測定來確定，而不是干柱時間的長短。如果跑干了，對于PUMP的影響可能還大些，所以先把管路中的空氣抽走。

12 問：制備純化蛋白、多肽，耗用流動相驚人，請問這些用過的流動相可以重蒸使用嗎？

流動相用一般減壓方法重蒸后，往往會形成有機溶劑和水會共沸，另外，由于減壓蒸餾屬于單次平衡，往往得不到100%純度的溶劑，這會使溶劑的配置有一定困難，從而使色譜的重現(xiàn)性和分離度會發(fā)生一定的變化。如果要求不是很高的話，一般可以分析重蒸后餾分中的各組分含量，計算后再使用。

要通過重蒸得到純物質(zhì)是極其困難的，必須采用精餾塔多級蒸發(fā)，單就設(shè)備投資和能耗來講，實驗室規(guī)模或生產(chǎn)規(guī)模的廢液回收處理已經(jīng)是得不償失。其實，我們沒有必要得到純的物質(zhì)。

13 問：反相色譜分離純化后，怎樣除去流動相產(chǎn)品中的TFA和乙腈或其他雜質(zhì)？

TFA是反相色譜分離中常用的添加劑，可以用凍干的辦法去除，還可以試試離子交換、凝膠層析、甚至透析和超濾，其中，離子交換層析效果比較好，還可以起到濃縮樣品的作用。 首先，凍干的辦法應(yīng)該可以幾乎*地除去TFA和乙腈，藥物實驗前先檢測一下凍干品中的殘留量，只要不超過允許范圍，這種辦法是zui簡單有效的。

其次，如果你的藥物的分裝量不大的話(<100ug)，建議你用離子交換層析，裝一個小一點兒的柱子，讓含鹽洗脫峰的蛋白濃度達10mg/ml以上，稀釋后*符合試驗要求。如果用分子篩，考慮稀釋，也先過一個離子交換。此外可以試試疏水層析。如果產(chǎn)品是堿的話，可能會形成TFA鹽，這樣通過上述方法就無法除去。一般可以用堿水洗，然后將產(chǎn)品萃取出來。或者在里面加入一定量的鹽酸，再干燥后形成鹽酸鹽。

14 問：同一種填料的分析柱、制備柱按線形放大公式套，分離度會不會變化？ 一般會有一定的變化，原因有以下幾點

（1）制備柱的裝填是否均勻，如不均勻則可能產(chǎn)生渦流擴散使各個組分的經(jīng)過通道的直徑不同、阻力不一樣，停留時間不同，色譜峰可能變寬。

（2）如果樣品在流動相中溶解度小，在制備色譜上會有不同的峰展寬。

（3）如果樣品在分析柱上有展寬或拖尾的現(xiàn)象，放大到制備柱上后峰的展寬和拖尾經(jīng)常會非常嚴重，導(dǎo)致分離失敗。

15 問：反相色譜分離后，如何快速從流動相中得到產(chǎn)品？

可以考慮先在低溫下，減壓旋蒸除去其中的有機溶劑，然后用萃取的方法把產(chǎn)品萃取出來，然后再低溫再旋蒸，這樣，就可以不將溫度升得很高而得到產(chǎn)品。 如果要直接蒸掉流動相，水泵的真空度要注意（要檢查氣密性），否則蒸水會很慢。一般比較好的泵在60-70度即可蒸掉水，如果泵的真空度不好，可能需要80-90度才行，這樣容易暴沸導(dǎo)致樣品損失。另為，溫度太高可能引起物質(zhì)變性。